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產品說明：

使用說明：

1. G418儲存液的配制（50 mg/mL，活性濃度）

1）活力單位的換算

根據此公式進行換算：（1000/A0）×A1=A2，其中A0是G418的活力值（Potency），因批次而異。可見批次對應的質檢報告，或者瓶子上的標簽。A1是想配制的活性G418濃度。A2是實際稱重的粉末與體積比濃度。

比如若所用批次的G418 活力值為：750 μg/mg，要配制50 mg/mL的G418活性濃度，則實際要配制的粉末濃度為1000/750×50 mg/mL=66.33 mg/mL。

如果配制10 mL的G418儲存液（活性濃度，50 mg/mL），則需要稱取663.3 mg粉末。

2）除菌和保存

根據上述換算得到的實際粉末稱重量，加入10 mL無菌去離子水內使其完全溶解。

先用5 mL無菌去離子水預濕潤0.22 μm針頭式過濾器，除盡水。之后使用此濾器過濾，除菌后分裝成單次使用的小量（如1mL）放到-20℃凍存，1年穩定。

【注】：①不要對混濁的溶液進行過濾，因為混濁的溶液意味著未完全溶解，過濾過程中會造成藥物損失，降低終液的活性。

              ②不建議使用液體培養基，NaCl，磷酸鹽溶液或者有機溶劑來制備儲存液。

2. 常用篩選濃度

一般來說，剛開始篩選轉化子需要高濃度的G418，并用一個較低濃度的G418用于維持培養。生長條件，細胞類型和其他的環境因素都可能影響G418的用量，因此第一次使用的實驗體系建議通過殺滅曲線（kill curve），即劑量反應性曲線，來確定最佳篩選濃度。

通常情況，哺乳動物細胞篩選范圍200-2000 μg/mL；植物細胞：10-100 μg/mL；酵母細胞：500-1000 μg/mL。

以下是一些細胞類型使用G418篩選使用的濃度，可做參考：

3. 殺滅曲線的建立

【注意事項】：

為了篩選得到穩定表達目的蛋白的細胞株，需要確定能夠殺死未轉染宿主細胞的抗生素最低濃度，可通過建立殺滅曲線來實現，至少選擇6個濃度。處理分裂期的細胞時G418的活性最強，因此在添加G418之前需要讓細胞培養一段時間。

1) 第一天：未轉化的細胞按照20-25%的細胞密度鋪在合適的培養板上，37℃，CO2培養過夜。

【注】：對于需要更高密度來檢測活力的細胞，可增加接種量。

2) 根據細胞類型，設定合適范圍內的濃度梯度。以哺乳動物細胞為例，可設定0，50，100，200，400，800，1000 μg/mL。

3) 第二天：去除舊的培養基，換用新鮮配制的含有相應濃度藥物的培養基。每個濃度做三個平行孔。

4) 接下來每3-4天更換新的含藥物培養基。
5) 按照固定的周期（如每2天）進行活細胞計數來確定阻止未轉染細胞生長的恰當濃度。選擇在理想的天數（通常是7-10天）內能夠殺死絕大多數細胞的最低濃度為穩定轉染細胞篩選用的工作濃度。

4. 穩定轉染細胞的篩選

1) 轉染48 h后，用含有適當濃度的G418篩選培養基來傳代細胞（直接傳代或者稀釋后傳代）。
【注】：細胞處于活躍分裂狀態時抗生素的殺傷效果最好。當細胞過于稠密，其效率會降低。為了得到較好的篩選效果，最好將細胞稀釋至豐度不超過25%。

2) 每隔3-4天更換含有藥物的篩選培養液。
3) 篩選7天后觀察并評估細胞克隆（集落）的形成情況。集落的形成可能還需要一周或者更多的時間，這取決于宿主細胞類型，轉染以及篩選效果。

4) 挑取并轉移5-10個抗性克隆于35 mm細胞培養板，繼續用含藥物的篩選培養液維持培養7天。

5) 之后更換正常培養基培養即可。

注意事項：

1) 本品不可高壓滅菌；
2) G418不要和其他的抗生素/抗真菌劑（如青霉素/鏈霉素）共同使用，因為它們是G418的競爭性抑制劑。其他的抗生素也會產生交叉活性。

3) 配制G418溶液時，一定要根據G418批次不同的活力值（potency）來進行換算，從而得到需要活性濃度的儲存液及工作液。
4) G418加入培養體系中未轉染的細胞有可能不會被殺死，原因在于藥物濃度過低，或者細胞密度過高。另外，快速分裂的細胞相對于緩慢增殖細胞，更容易被殺死。對照細胞（未轉染）可能抗生素添加5-7天后才能殺死，轉染細胞（抗性克隆子）的克隆需要10-14天形成。

5) 即使加入殺死劑量的G418，細胞可能會繼續分裂2-3次。G418的藥效通常在2天后才變得明顯。

6) 為了您的安全和健康，請穿實驗服并戴一次性手套操作。

本產品僅供科研使用，不可用于臨床診斷應用或其他用途。